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ZS-Q10G静脉可视大鼠尾注固定器

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ZS-Q10G静脉可视大鼠尾注固定器

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科研仪器
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产品描述
英文:

静脉可视大鼠尾注固定器(型号 ZS-Q10G)

货号1059023 

 

 

 

         简介

 

                    我们同行都知道大鼠尾静脉注射是一件很不容易的事,因其皮厚有鳞血管深,动物凶猛难绑定。大家一致认为给大鼠尾注没有任何可投机取巧的方法,只能多练习,找手感、积累经验、熟能生巧,其实不然,初学者要想打好大鼠尾静脉注射只要掌握住这三条就能打好,一是要把动物牢固保定,二是让动物血管充分充盈,三是知道针是否进入了血管。如果这三条都做到了,那么大鼠尾注还困难吗?其实我们就是针对这三个问题研发了大鼠静脉可视尾注固定器:一、使用了李氏快装鼠筒,装鼠速度快、保定牢固、鼠位舒适,不会前窜,保证了注射时的稳定二、使用赶压方式将鼠尾尾根部分血管中的血赶压到鼠尾的后半部分,使其血管充分充盈,方便针头的进入。三、使用特殊的黄光照射鼠尾,使鼠尾的血管显现出来,在可视的情况下使针尖刺入做到有的放矢,不再是单凭手感的盲打,针是否进入血管,摆动针头看血管是否跟着动就知道针是否在血管中不再追求那种针进血管中的落空感(其实这种手感,一般短时间内很难体会出来)。这三个问题都解决了,我们将从尾注的烦恼中解放出来。我们这款尾注固定器针对这三个问题,经过三年的潜心研究,用新思维、新理念,精心设计制造出来了,这款小型仪器它将用新的原理和新的操作方式让使用者耳目一新。这也将成为鼠尾静脉注射道路上的一个重要里程碑。

 

        主要技术指标

李氏快装鼠筒可盛装150-450g的大鼠

装小于220g的鼠时筒内应加装内衬

10W LED 黄光灯

配带上压块释放脚踏开关

电源适配器:输入:AC100-220V   50Hz

         输出:DC  12V 2A

整机尺寸:350 * 210 * 200  mm

整机重量:3.5 Kg

 

使用方法

(一)连接

1.接通电源:将电源适配器分别连接电源和仪器上,接通后主机面板绿色指示灯亮。

 2.连接脚踏开关:将脚踏开关插头插接在主机箱上。(注:脚踏开关不连接,上压块无法吸合)

 3.连接鼠尾透视灯:将L型鼠尾托上的灯线插头插在主机箱相应的插座上,按动前面上的黄色按钮,黄色灯应亮

(二)装鼠

         1.快速装鼠筒的使用:装鼠筒一改过去那种大鼠钻入式的装鼠方式,(大鼠钻入式的装鼠方式首次使用还可以,动物在不知的情况下,很容易进入,但动物经过几次后知道进入的不适感觉,再让其进入就较困难了。)快速装鼠筒是后拉尾式装鼠方式,箕型的鼠筒前端能顺利地将鼠拉入筒内,为了避免鼠在筒内滚转身体,筒内安装了腹部限位块,能有效地限制大鼠身体在筒内翻转,大鼠被拉入筒后,可用前堵头将其堵在里面,前堵头的孔是根据大鼠头骨的生理曲线设计的,能有效地控制鼠的头部,但又不影响正常的呼吸,同时还能让大鼠的前肢找到一个舒适的位置,堵头的固定位置应以动物不能自由活动但又不影响动物肺部扩张,正常呼吸为准(通过透明的有机玻璃可观察调整),注:装小于220g的鼠时筒内应加装内衬,装大于220g的鼠时应取出内衬

       2.装好鼠的筒放置于主机上面板的滑槽上,鼠筒应侧放(因静脉血管在鼠尾的两侧),定位销进入定位孔,鼠尾通过开口的档板放置在鼠尾挤压板下板的沟槽里,按动前面的黄色按钮,黄色灯亮,观察鼠尾血管是否摆正,再按一下黄色按钮,关闭黄灯,随后将鼠尾上压块顺时针     90°压下,直到听到清脆的吸合声才可松手,此时鼠尾已被压住,按压时应缓慢加力,为让鼠尾根部的血液,有时间挤压到鼠尾的梢部,在下压的同时黄光灯自动点亮,这时可以根据黄光透射血管的情况调整黄光亮度旋钮,使血管达到很清楚(环境的亮度变化会影响血管的显现情况,建议在较暗的室内操作,应避开强光直射)。

      3.托尾槽宽度的调整:由于鼠的大小不同和注射位置的不同,鼠尾的粗度、直径有较大的变化,所以应及时地调整托尾槽的宽度,托尾槽的宽度以鼠尾能放入2/3为准,这样鼠尾可以紧贴光灯,使尾静脉显示的更清楚,固定鼠尾更稳定。

     4.前支脚调整:为了方便注射,静脉可视大鼠尾注固定器应有一定的倾斜度,固定器前端机脚可调整斜度,一般以机脚全部拧出为使用角度,也可根据个人使用习惯或调低或加高。

     5.注射位置的调整:不管使用多鼠均应从鼠尾部的下1/3处进针,这样逐渐下向上打可避免打过的针眼出现漏液现象。因使用动物的品系、大小不同,尾长度也不同,这样就需要调整注射时的位置,其方法是松开左边L型鼠尾托架调整紧固螺丝,拉动L型鼠尾托架至合适位置后旋紧即可。

     6.遮光罩的使用:遮光罩是为了遮住外界的光线,造成局部变暗有利于观察血管,能更清楚地看到尾静脉血管和针头进入的情况。如果外界的光线不是很亮可以不使用遮光罩,打开放在一边,遮光罩是软性的不会影响到其他操作。

     7.注射:注射使用的针头应在7号针以下,6号较为合适,过粗的针对血管损伤过大,用后止血困难。目前也有用头皮针后接1毫升注射器用的。这还是为了看回血情况来判断是否进入血管,不管用什么样的针,重要的一点是能看到血管,同时又能看到针在哪里了,这样注射就很容易了,针头进入血管后针头左右摆动一下看血管是否跟着动,这是判断进入血管的好方法。

     确定针进入血管后,踏动脚踏开关,鼠尾上压块上行逆时针转动90°打开,这时就可以将药物推入静脉,推入时应缓慢,这样可避免动物出现充血性心衰。注射完成后应用棉球按压针孔处半分钟以上,或用止血夹止血,避免皮下出血或药液回流,影响下次注射,备用鼠筒是为了提高效率轮换使用的。(如果动物样本大也可多购鼠筒)

 

注意事项                                       

         ① 鼠筒为有机玻璃制,应避免接触酒精和各种有机溶剂,否则易出现龟裂或损坏。

 ② 动物在被装筒捉持时会有应激反应,粪尿过多,应及时清理上板面和鼠筒内的粪便。

 ③仪器不用时应及时拔掉电源,避免仪器过热损坏。

    仪器不可随意拆卸,如有问题请及时与厂家联系。

 
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